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分析苯并咪唑药物的实验方法

2019年09月25日 21:01 来源:上海斯迈欧分析仪器有限公司

MS/MS 检测 API 4000™ LC-MS/MS液质联用系统,Turbo V™离子源,正离子 / 负离子模式,MRM扫描方式。 

样品制备(肉产品)[1]

1.试样代表性部位,以捣碎机进行充分匀化。匀化后的试样在分析前一直冷冻保存。

2.称取(2.5±0.05) g均匀试样置于离心管底部。分别制备四份空白组织试样及一份对照试样、三份 添加标准的试样。在对照试样中加入100 µL纯DMSO。在组织试样中加入50 µL DMSO。在空白组织试样 和组织试样中分别加入50 µL 10 µg/mL工作溶液。然后在已加入50 µL 10 µg/mL工作溶液的三个空白组织试 样中分别加入50 µL 20、10、5 µg/mL工作溶液。

3.制备的每一试样中加入2.5 mL 6 mol/L HCl,盖好,将试样管放到(110±4) ℃的烘箱内。

4.1 h后把试样从烘箱中取出,将试样管放于干冰或冰上约5 min,冷却至室温。

5.向每个试样中加入2.0 mL水,以涡式混匀器混匀试样,用pH计监测pH值。慢慢加入足量(约1.23 g) 的碳酸钠,加入时间需4~5 min,调节pH至8~9.5。

6.向每个试样内加入15 mL乙酸乙酯,盖上塞子,平放于试管架上,振摇5 min。然后取下塞子,于 4000 r/min将试样离心5 min。

7.用吸移管将乙酸乙酯提取液转入另一50 mL玻璃离心管内,应尽量转移*。

8.重复操作步骤6和7,再次提取每个试样,把相应的提取液合并于各自的50 mL离心管内。

9.向每个合并的乙酸乙酯提取液中加入4.0 mL 1 mol/L HCl,盖上塞子,平放于试管架上振摇5 min。取 下塞子于4000 r/min离心5 min。

10.尽量*吸去乙酸乙酯相。在(35±5) ℃水浴上蒸去水溶液上残留的乙酸乙酯。

11.用涡式混匀器将试样混匀,同时慢慢加入足量(约0.33 g)碳酸钠,加入时间需1~2 min。用pH计 监测pH值,每个试样的pH值应为8~9.5。

12.每个试样中加入20 mL甲苯,盖上塞子平放于试管架上振摇5 min,取下塞子于4000 r/min离 心5 min。

13.尽量*吸去甲苯相。在(35±5) ℃的水浴上蒸去水相上残留的甲苯。

14.对于每一个试样,相对应将一10 mL玻璃注射器用夹子固定在环形架上。注射器的路氏接头前端 连接SEP-PAK C18柱体。

15.将每支柱用2 mL甲醇预洗,而后用2 mL 0.2 M磷酸钾缓冲溶液(pH 8.0)洗涤。加入每种试剂后, 经过安装于注射器顶部的橡皮塞缓缓通入氮气,当氮气开始出柱时即停气。氮气流速1~2 mL/min。弃去 洗脱液。

16.从步骤13中得到的每一试样水相转入预先洗涤好的各注射器柱系统内。用步骤14的方法,应用 氮气使溶液流经柱体洗提,然后各取每一试样管水洗液1 mL(经涡式混匀器混匀),使用巴氏吸移管采用类 似方法将水洗液分别转入各注射器柱系统内,弃去洗脱液。

17.再取每个试样管水洗液1 mL(经涡式混匀器混匀),分别转入各注射器柱系统内,按步骤15的方 法应用氮气使此水洗液流经柱体洗提,弃去洗脱液。

18.向每一注射器柱系统内分别加入2 mL甲苯,按步骤15的方法用氮气使甲苯流经柱体洗提,弃去 洗脱液。

19.在每一注射器柱系统下面分别放置一15 mL离心管,向每个柱系统内加入2 mL乙酸乙酯,按步骤 15的方法用氮气使乙酸乙酯流经柱体进行洗脱。在这部分洗脱液中含有待测化合物。

20.向步骤19中得到的每份洗脱液中分别加入约0.5 mL甲醇,混匀,得到均匀的溶液。

21.至干后加入0.5 mL水 — 甲醇溶液(70+30),混匀,重新溶解残渣。

22.30 min后将每个重新溶解的试样加入微量过滤装置内,采用0.2 µm滤膜过滤。然后将每个过滤器 及试样提取液于4000 r/min离心5~10 min。

23.将滤液转入15 mL具塞玻璃离心管内,用水 — 甲醇(70+30)调节每一滤液体积为0.5 mL。混匀后 移取0.1 mL供分析。

 

色谱分离条件 Agilent 1100 系统:G1312A二元泵系统、G1367A型自动进样器、柱温箱。 色谱柱:Inertsil ODS-3 150 mm×2.1 mm。 流速:200 µL/min。 流动相:水 / 甲醇 + 5 mM 甲酸铵(pH=4.0)。 柱温箱温度:25 ℃;进样体积:20 µL。MS/MS 检测 API 4000™ LC-MS/MS液质联用系统

 

 

 

关键词: 液质联用,LC-MS

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